魯創LC-3000有效液相色譜儀測定食品中B1

     山東魯創LC-3000有效液相色譜儀測定食品中B1

   B1是中毒性及致癌性*強的物質，已導致嚴重的食品**問題。花生、玉米、稻谷、小麥、花生油等糧油食品容易受B1的污染，造成超標。國家質檢總局規定，B1是大部分食品的必檢項目之一。

山東魯創LC-3000有效液相色譜儀測定食品中B1，下面以茶葉為例

1.適用范圍
本方法適用于出口茶葉中B1含量的檢驗。

2.原理概要
樣品用提取，提取液經硅膠柱凈化，凈化后的提取液用三衍生，用配有熒光檢測器的有效液相色譜儀測定，外標法定量。

3.主要試劑和儀器
3.1.主要試劑
；
正己烷；
苯；
甲醇：紫外光譜級；
乙腈：紫外光譜級；
三；
乙腈-水溶液（1＋1）；
-甲醇溶液（95＋5）；
苯-乙腈溶液（98＋2）；
B1標準品：純度≥99%；
B1標準溶液：準確稱取適量的B1標準品，以苯-乙腈溶液于棕色容量瓶中，配成濃度為10μg/mL標準貯備液。根據需要，再配成適當濃度的標準工作溶液。
3.2.儀器
山東魯創LC-3000有效液相色譜儀，配有熒光檢測器；
山東魯創 硅膠小柱；
山東魯創振蕩器：HMS系列；
山東魯創超聲波：HU、HS系列；

山東魯創NC-2012氮吹儀；
山東魯創濾膜：有機系用，0.45μm；
山東魯創微孔濾膜過濾器

旋轉蒸發器；
微量注射器；
離心管：5mL具塞磨口；
粉碎機。

4.試樣的抽取與制備
4.1.抽樣方法
從整批產品堆垛的上下不同部位隨機抽取2.2規定的件數，逐件開啟。分別倒出全部茶葉于塑料布上，用取樣鏟從每件中各取出有代表性的樣品約500g。將所取樣品充分混勻，用四分法或分樣器逐步縮分出500g，裝入潔凈密封的樣品筒內，加封后，標明標記，及時送實驗室。
4.2.試樣制備
將所取回樣品全部磨碎，通過20目篩，混勻，均分成兩份試樣，裝入潔凈容器內，密封，標明標記。
4.3.試樣保存
將試樣于室溫下保存。
注：在抽樣和制樣的操作過程中，**防止樣品受到污染或發生殘留物含量的變化。

5.過程簡述
5.1.提取
稱取試樣5.0g（**到0.1g）置于100mL具塞錐形燒瓶中，加入15mL，于振蕩器上提取30min，然后經墊有玻璃纖維的漏斗過濾。收集濾液于旋轉蒸發器的具尾管圓底燒瓶內，并用洗滌濾渣，收集濾液至約20mL。
5.2.凈化
用旋轉蒸發器將上述濾液在50℃水浴中濃縮至約1mL，經0.45μm濾膜過濾后，注入硅膠小柱中。用2～4mL正己烷洗滌燒瓶后淋洗小柱，棄去流出液。然后用3～4mL-甲醇溶液以每秒鐘2滴的流速洗脫，收集洗脫液于離心管中。用氮氣儀緩緩吹干，供衍生用。
5.3.衍生
5.3.1.試樣
加200μL正己烷和50μL三于上述離心管中，蓋緊磨口塞，超聲振蕩1min，靜置10min，用氮吹儀緩緩至干。用乙腈-水溶液（1＋1）定容至1.0mL，超聲1min，用0.5μm濾膜過濾，濾液供液相色譜用。
5.3.2.標準工作溶液
取1.0mL標準工作溶液，用氮吹儀緩緩吹干，按5.3.1步驟操作。
5.4.測定
5.4.1.色譜條件
色譜柱：NOVA PAKc18，300mm×3.9mm（內徑）；
流動相：甲醇-水溶液（42＋58）；
流速：0.8mL/min；
熒光檢測器：激發波長375 nm，發射波長425 nm；
色譜柱溫度：室溫。
5.4.2.測定
根據樣液中B1的含量情況，選定峰高相近的標準工作溶液。標準工作溶液和樣液中B1衍生物的響應值均應在儀器檢測線性范圍內。對標準工作溶液和樣液的衍生物溶液等體積參插進樣測定。在上述色譜條件下，B1衍生物保留時間約為8min。
5.4.3.空白試驗
除不加試樣外，按上述測定步驟進行。

6.結果計算
用色譜數據處理機進行數據處理

7.低限和回收率測定
7.1.低限
本方法的測定低限為0.001mg/kg。
7.2.回收率
回收率的實驗數據：B1的添加濃度在0.001～0.5mg/kg范圍內，回收率為89.1%～104.9%。

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